Перейти к:
Оценка взаимосвязи между фармакокинетикой и фармакодинамикой тропоксина у крыс
Аннотация
Ключевые слова
Для цитирования:
Жердев В.П., Колыванов Г.Б., Литвин А.А., Новицкий А.А., Ганьшина Т.С., Горбунов А.А., Мирзоян Р.С. Оценка взаимосвязи между фармакокинетикой и фармакодинамикой тропоксина у крыс. Фармакокинетика и Фармакодинамика. 2016;(3):21-25.
For citation:
Zherdev V.P., Kolyvanov G.B., Litvin A.A., Novitskyi A.A., Ganshina T.S., Gorbunov A.A., Mirzoyan R.S. Assessment of pharmacokinetics-pharmacodynamics relationship of tropoxine in rats. Pharmacokinetics and Pharmacodynamics. 2016;(3):21-25. (In Russ.)
Введение
К наиболее распространённым хроническим нейроваскулярным заболеваниям относится мигрень, которая поражает от 11 до 30% населения разных стран в наиболее работоспособном возрасте. В современном мире количество пациентов с данным заболеванием ежегодно растёт, а имеющиеся в распоряжении неврологов фармакологические препараты не лишены существенных побочных эффектов [1, 7, 8, 10].
В ФГБНУ «НИИ фармакологии имени В.В. Закусова» разработано лекарственное средство из группы производных оксима тропинона, обладающее противомигренозной антисеротониновой активностью — тропоксин [2—4]. При создании новых лекарственных средств необходимым этапом является изучение их фармакодинамики и фармакокинетики на доклиническом уровне. Результаты этих исследований в ряде случаев позволяют установить взаимосвязь между ними, что в дальнейшем может быть использовано для переноса данных с животных на человека.
Поэтому целью настоящей работы явилось изучение фармакодинамики и фармакокинетики тропоксина у крыс и выявление взаимосвязей между ними.
Материалы и методы
По химическому строению молекула тропоксина представляет собой 3-(3,4,5-триметоксибензоилокси- имино)-8-метил-8-азабицикло- [1, 2, 3] октана гидрохлорид. В работе использована субстанция тропоксина, синтезированная в опытно-технологическом отделе ФГБНУ «НИИ фармакологии имени В.В. Закусова».
Фармакодинамику и фармакокинетику тропоксина после внутривенного (в/в) введения изучали на нелинейных крысах-самцах, полученных из питомника «Столбовая» (Московская область). Животных содержали в условиях вивария ФГБНУ «НИИ фармакологии имени В.В. Закусова» при 12-часовом световом режиме, на стандартной диете. Все эксперименты с животными проводили в соответствии с международными правилами (Директива 86/629/ЕЕС) и правилами работы с животными, утверждёнными этической комиссией ФГБНУ «НИИ фармакологии имени В.В. Закусова».
Фармакологические свойства тропоксина изучали на 30 наркотизированных (хлоралгидрат 350—400 мг/кг, внутрибрюшинно) нелинейных крысах массой 250-300 г.
Состояние мозгового кровообращения у животных оценивали с помощью ультразвукового флоуметра и лазерного допплеровского флоуметра фирмы «Transonic System Inc.» (США). Одновременно в экспериментах регистрировали изменения артериального давления в бедренной артерии. Запись показателей кровотока и артериального давления производили на полиграфе «BIOPAK» США, соединённым с персональным компьютером [5].
Для изучения антисеротониновых свойств исследуемых веществ в работе оценивали констрикторные реакции внутренней сонной артерии у наркотизированных крыс в условиях искусственной вентиляции лёгких в ответ на введение серотонина (5НТ, 20 мкг/кг, в/в; «Sigma Aldrich», ФРГ) или избирательного агониста 5НТ2В/2С-рецепторов мета-хлорфенилпиперазина (0,1 мг/кг, «Sigma Aldrich», ФРГ).
Тропоксин вводили в/в в дозе 10 мг/кг, что соответствует примерно 10% его ЛД50 (78мг/кг). Исследуемые вещества вводили в бедренную вену животных.
Фармакокинетику тропоксина после в/в введения изучали на нелинейных крысах-самцах массой 200±20 г. Содержание тропоксина определяли в плазме крови крыс через 0,0; 0,33, 0,5, 0,66, 0,83, 1,0, 1,33, 1,5, 2, 4, 6 и 7 ч после введения препарата.
Отбор образцов крови производили в пробирки, обработанные ЭДТА. Плазму крови немедленно отделяли центрифугированием при 2 500 об/мин в течение 10 мин. Плазма крови отбиралась пипеткой в пластиковые криопробирки и замораживалась при температуре не выше —18 °C.
Для определения тропоксина в биоматериале разработана и валидирована методика высокоэффективной жидкостной хроматографии с масс-спектрометрическим детектированием, позволяющая после жидкость-жидкостной экстракции детектировать 2,5 нг/мл исследуемого вещества. Методика была линейна в диапазоне 5—1000 нг/мл. Степень извлечения тропоксина из плазмы крови составила в среднем 82,06±5,36%.
Статистическую обработку данных проводили с использованием программ «Biostat» и «Stаstistika» v. 8.0 («Statistika Inc.», США). Средние данные в тексте представлены в виде медианы или средней арифмети-ческой и её стандартной ошибки (M±m). Результаты рассматривали как значимые при p≤0,05.
Результаты и обсуждение
Цереброваскулярная антисеротониновая активность тропоксина
Проведённые опыты позволили установить, что серотонин (20 мкг/кг, в/в) в большинстве случаев на первой минуте после введения вызывает уменьшение объёмной скорости мозгового кровотока в системе внутренней сонной артерии в среднем на 40,0% (л=10). Через 5—7 мин после инъекции 5НТ наблюдается восстановление исходного уровня мозгового кровотока. Уменьшение притока крови в мозг в большинстве опытов сопровождается понижением уровня артериального давления. Тропоксин (10 мг/кг, в/в) в этих условиях существенно ослабляет изменения, вызванные серотонином. Через 20, 30, 40 и 50 мин после введения тропоксина уменьшение притока крови в мозг под влиянием серотонина составляет 27,8%, 29,4%, 31,5% и 32,1%, соответственно (контроль: 40,0%; p≤0,05, рис. 1). К 60-й мин после введения тропоксина реакция мозгового кровотока на серотонин восстанавливается и составляет 41,8%.
В серии опытов изучали влияние тропоксина на введение агониста 5НТ2В/2С-рецепторов- m-CPP, который, согласно данным литературы [1, 6, 9], провоцирует приступ головной боли у больных мигренью, вызывает увеличение пропотевания альбуминов плазмы из менингеальных сосудов и активацию чувствительных волокон тригеминоваскулярной системы.
В опытах с использованием m-CPP было показано, что если до введения тропоксина агонист 5НТ2В/2С-рецепторов вызывает снижение мозгового кровотока во внутренней сонной артерии в среднем на 25%, то через 20 мин после введения тропоксина снижение кровотока под влиянием m-CPP составляет 19,2%, через 30 мин — 13,1%, через 40 мин — 11,3% и через 50 мин — 18,7% (p≤0,05, рис. 2). Затем к 60-й минуте реакция сосудов мозга на введение m-CPP даже несколько усиливается. При введении m-CPP артериальное давление кратковременно снижается в среднем на 33%, затем восстанавливается до значений, близких к исходным. Тропоксин не оказывает статистически значимого влияния на данную реакцию (см. рис. 2).
Далее в серии опытов m-CPP вводили крысам через 20 мин после тропоксина, и оказалось, что в этих условиях снижение мозгового кровотока под влиянием агониста 5НТ2В/2С-рецепторов составило только 6% (20 мин), 6,8% (30 мин), 7,5% (40 мин), 12% (50 мин), 17% (60 мин). Затем к 80-й минуте констрикторная реакция сосудов мозга под влиянием m-CPP постепенно восстанавливалась до реакции, наблюдаемой в контрольных опытах, и составила в среднем 27,5% (рис. 3). При этом тропоксин не оказывал статистически значимого влияния на реакцию артериального давления на m-CPP.
Фармакокинетика тропоксина
На рис. 4 представлен фармакокинетический профиль тропоксина в плазме крови крыс после однократного в/в введения в дозе 10 мг/кг.
Из рис. 4 видно, что снижение концентраций тропоксина в плазме крови крыс носит монофазный характер. Усредненный период полувыведения исследуемого соединения составил 1,34 ч.
Фармакодинамико-фармакокинетические взаимосвязи
Предпринята попытка оценить взаимосвязь между усредненными концентрациями тропоксина (фармакокинетическая переменная) в плазме крови и медианой изменения притока крови в мозг крыс (фармакодинамическая переменная) после однократного в/в введения тропоксина в дозе 10 мг/кг на фоне в/в введения серотонина и m-CPP. Изменение сравниваемых параметром регистрировали в течение 1,0 ч — 80 мин после введения препарата. На рис. 5—7 представлены полученные результаты.
Результаты, представленные на рис. 6 и 7, отличаются друг от друга тем, что в первом случае сначала крысам в/в вводили m-CPP, а затем тропоксин, а в последнем случае — сначала тропоксин, а через 20 мин — m-CPP.
Как видно из рис. 5 выявлена прямая зависимость между падением концентрации тропоксина в плазме крови крыс и изменениями мозгового кровотока на фоне введения серотонина (r=0,7295). Для агониста 5НТ2в/2С рецепторов — m-CPP такая зависимость не обнаружена, если сразу после m-CPP животным вводили тропоксин (рис. 6). Коэффициент корреляции линейного уравнения характеризовался значением 0,3442. В то же время выявлена взаимосвязь между изучаемыми параметрами в случае введения тропоксина через 20 мин после введения агониста 5НТ2В/2С рецепторов — рис. 7.
Выводы
1. Тропоксин в значительной степени ослабляет констрикторное влияние и серотонина, и агониста 5НТ2В/2С рецепторов на сосуды мозга крыс.
2. Выявлена прямая зависимость между падением концентрации тропоксина в плазме крови крыс и изменениями мозгового кровотока на фоне введения серотонина и в случае введения тропоксина через 20 мин после введения агониста 5НТ2В/2С рецепторов — метахлорфенилпиперазина.
Список литературы
1. Амелин А.В., Игнатов Ю.Д., Скоромец А.А. Мигрень (патогенез, клиника, лечение). СПб медицинское издательство, 2001.
2. Ганьшина Т.С., Горбунов А.А., Гнездилова А.В. и др. Хим. фарм. Журнал. 2016; 50 (1): 19-23; Pharm. Chem. J. 2016; 50 (1): 19-23.
3. Косточка Л.М., Мирзоян Р.С., Ганьшина Т.С., Середенин С.Б. Хим. - фарм. журн. 2010; 44 (9): 6-9; Pharm. Chem. J. 2010; 44 (9): 472-475.
4. Мирзоян Р.C., Середенин С.Б., Ганьшина Т.С. и др. Эксперим. и клин. фармакол. 1998; 61 (2): 28-31.
5. Мирзоян Р.C., Плотников М.Б., Ганьшина Т.С. и др. Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств. 2012; Часть первая. М.: Гриф и К, 480-487.
6. Соколов А.Ю., Любашина О.А., Пантелеев С.С. Нейрохимия. 2011; 2: 104-112.
7. Dent W., Stelzhammer B., Meindl M. et al. Headache. 2011; 51 (10): 1483-1492. Doi: 10.1111/j. 1526-4610. 2011.
8. Pezzini A., Del Zotto E., Giossi A., et al. Stroke Res. Treatment. 2010; 9, doi:10.4061/2011/304921.
9. Panconesi A., Sicuteri R. Cefalalgia. 1997; 17 (1): 3-14.
10. Rist P.M., Buring J.E., Kase C.S. et al. Circulation. 2010; 122 (24): 2551-2557.
Об авторах
В. П. ЖердевРоссия
Г. Б. Колыванов
Россия
А. А. Литвин
Россия
А. А. Новицкий
Россия
Т. С. Ганьшина
Россия
А. А. Горбунов
Россия
Р. С. Мирзоян
Россия
Рецензия
Для цитирования:
Жердев В.П., Колыванов Г.Б., Литвин А.А., Новицкий А.А., Ганьшина Т.С., Горбунов А.А., Мирзоян Р.С. Оценка взаимосвязи между фармакокинетикой и фармакодинамикой тропоксина у крыс. Фармакокинетика и Фармакодинамика. 2016;(3):21-25.
For citation:
Zherdev V.P., Kolyvanov G.B., Litvin A.A., Novitskyi A.A., Ganshina T.S., Gorbunov A.A., Mirzoyan R.S. Assessment of pharmacokinetics-pharmacodynamics relationship of tropoxine in rats. Pharmacokinetics and Pharmacodynamics. 2016;(3):21-25. (In Russ.)