<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.3 20210610//EN" "JATS-journalpublishing1-3.dtd">
<article article-type="research-article" dtd-version="1.3" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">phkinetica</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Фармакокинетика и Фармакодинамика</journal-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Pharmacokinetics and Pharmacodynamics</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn pub-type="ppub">2587-7836</issn><issn pub-type="epub">2686-8830</issn><publisher><publisher-name>ООО «Издательство ОКИ»</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id custom-type="elpub" pub-id-type="custom">phkinetica-155</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Research Article</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="ru"><subject>АКТУАЛЬНЫЙ ОБЗОР</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="en"><subject>CURRENT REVIEWS</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>Влияние высокомолекулярных вспомогательных веществ на оптимизацию фармакокинетических свойств лекарственных препаратов</article-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Effects of the high-molecular excipients on optimization of the pharmacokinetic properties of drugs</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Бочков</surname><given-names>П. О.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Bochkov</surname><given-names>P. .</given-names></name></name-alternatives><email xlink:type="simple">noemail@neicon.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Колыванов</surname><given-names>Г. Б.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Kolyvanov</surname><given-names>G. .</given-names></name></name-alternatives><email xlink:type="simple">noemail@neicon.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Литвин</surname><given-names>А. А.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Litvin</surname><given-names>A. .</given-names></name></name-alternatives><email xlink:type="simple">noemail@neicon.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Жердев</surname><given-names>Владимир Павлович</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Zherdev</surname><given-names>V. .</given-names></name></name-alternatives><email xlink:type="simple">zherdevpharm@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Шевченко</surname><given-names>Р. В.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Shevchenko</surname><given-names>R. .</given-names></name></name-alternatives><email xlink:type="simple">noemail@neicon.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff-1"><aff xml:lang="ru"><institution>ФГБНУ «НИИ фармакологии имени В.В. Закусова»</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>FSBSI «Zakusov Institute of Pharmacology»</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><pub-date pub-type="collection"><year>2016</year></pub-date><pub-date pub-type="epub"><day>09</day><month>04</month><year>2020</year></pub-date><volume>0</volume><issue>1</issue><fpage>3</fpage><lpage>11</lpage><permissions><copyright-statement>Copyright &amp;#x00A9; Бочков П.О., Колыванов Г.Б., Литвин А.А., Жердев В.П., Шевченко Р.В., 2020</copyright-statement><copyright-year>2020</copyright-year><copyright-holder xml:lang="ru">Бочков П.О., Колыванов Г.Б., Литвин А.А., Жердев В.П., Шевченко Р.В.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="en">Bochkov P..., Kolyvanov G..., Litvin A..., Zherdev V..., Shevchenko R...</copyright-holder><license license-type="creative-commons-attribution" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/" xlink:type="simple"><license-p>This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.</license-p></license></permissions><self-uri xlink:href="https://www.pharmacokinetica.ru/jour/article/view/155">https://www.pharmacokinetica.ru/jour/article/view/155</self-uri><abstract><p>В обзоре рассмотрено использование различных природных и синтетических вспомогательных веществ, как в оптимизации свойств лекарственных форм, так и при изготовлении различных систем доставки лекарственных препаратов. Приведена краткая характеристика вспомогательных веществ с точки зрения их влияния на физико-химические характеристики лекарственных форм.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="en"><p>Applying of different natural and synthetic excipients as in developing of drug forms as manufacturing various drug delivery systems was shown.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>вспомогательные вещества</kwd><kwd>модифицированное высвобождение</kwd><kwd>системы направленной доставки</kwd><kwd>фармакокинетика</kwd><kwd>биодоступность</kwd><kwd>excipients</kwd><kwd>modified release</kwd><kwd>drug delivery systems</kwd><kwd>pharmacokinetics</kwd><kwd>bioavalability</kwd></kwd-group></article-meta></front><body><p>ВведениеВыбор конкретных веществ в процессе разработки новых лекарственных препаратов зависит от ряда физико-химических свойств рассматриваемых вариантов соединений [1, 2]. При этом растворимость активного ингредиента играет в подавляющем большинстве случаев определяющую роль. Наиболее распространённой стратегией в фармацевтической индустрии является выбор веществ или их модификаций, физико-химические свойства которых не являются ограничением для изготовления лекарственных форм (ЛФ) с обычным высвобождением. В случае если соединение не удовлетворяет названному критерию, наиболее распространённый подход заключается в использовании некоторой соли данного вещества.</p><p>Растворимость основного компонента лекарственного препарата оказывает неоднозначное влияние на свойства изготавливаемой ЛФ [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>]. Так, исследователи с одной стороны, сталкиваются с необходимостью повышать растворимость с целью увеличения биологической доступности препарата, и в то же время контролировать профиль растворения для хорошо растворимых веществ с тем, чтобы нивелировать резкие скачки концентраций препарата в системном кровотоке, а также увеличить время пребывания лекарственного вещества (ЛВ) в организме. Наличие в составе ЛФ высокомолекулярных вспомогательных веществ является одним из основных факторов, влияющих на степень и скорость всасывания препаратов из желудочно-кишечного тракта в системный кровоток [4, 5]. Известно, что вспомогательные вещества (ВВ), вводимые в состав ЛФ, могут взаимодействовать как между собой, так и непосредственно с ЛВ. Как следствие, такие взаимодействия сопровождаются изменением химических свойств, стабильности ЛФ, фармакокинетики, биотрансформации и фармакологической активности препарата [6, 7].Высокомолекулярные соединения (ВМС) используются также в качестве носителей активного компонента в ЛФ с заданными свойствами для повышения биологической доступности (БД) и увеличения периода полувыведения препарата [8, 9].Применение ВВ позволяет придать лекарственному веществу удобную для применения форму и влиять на биологическую доступность действующего вещества, являясь его носителем. Примером носителей такого рода могут быть иониты, различные сорбенты, полимеры или циклодекстрины [10—13].</p><p>Используемые ВВ должны отвечать ряду требований. Данные соединения должны обеспечивать проявление надлежащего фармакологического действия ЛВ и особенностей его фармакокинетики. Используемые количества ВВ должны быть биологически безвредны, не оказывать токсического и аллергизирующего действия. Также, ВВ не должны взаимодействовать как с ЛВ, так и с упаковочными материалами [14, 15].Значительная часть химических соединений, проявивших во время скрининга фармакологическую активность, имеют низкую растворимость в воде. В свою очередь, затруднение перехода ЛВ в раствор вызывает отсутствие корреляции дозы и фармакологического эффекта, а также снижает биологическую доступность ЛВ [<xref ref-type="bibr" rid="cit16">16</xref>]. Такие подходы, как химическая модификация ЛВ, связывание ЛВ с магнитными носителями, заполнение липосом, получение твёрдых дисперсных систем, введение в рецептуру дополнительных веществ различной природы, ковалентное и нековалентное связывание с ВМС широко используются как для улучшения биофармацевтических свойств ЛВ, так и с целью понижения их токсичности и раздражающего действия [17, 18].</p><p>Современное получение ЛФ немыслимо без использования большой группы ВВ органического и неорганического происхождения, как ионогенного, так и неионогенного характера. По своей природе ВВ могут быть как природными, так и синтетическими. Данные соединения могут существенно влиять на БД, продолжительность, интенсивность и характер действия лекарств [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>]. Ведущее место в арсенале ВВ, позволяющих получать лекарства с заданными свойствами, принадлежит поверхностноактивным веществам (ПАВ) [<xref ref-type="bibr" rid="cit20">20</xref>]. В зависимости от влияния на физико-химические характеристики и фармакокинетику ЛФ, ВВ можно разделить на несколько разных групп.</p><p>ВВ используются как для создания дисперсионных сред в жидких ЛФ, так и в качестве наполнителей для твёрдых ЛФ; а также в качестве основ для мазей и суппозиториев (вода, этанол, глицерин) [<xref ref-type="bibr" rid="cit21">21</xref>]. Количество таких компонентов (в процентах) от общей массы лекарственной формы не нормируется.К группе пролонгаторов относят ВВ, увеличивающие время нахождения ЛВ в организме. В случае быстрого выведения, либо разрушения ЛВ в организме возникает необходимость частого введения препарата, что может вызывать дополнительные сложности. Создание пролонгированных ЛФ может быть направлено, в том числе, на увеличение времени между повторным приёмом препарата за счёт длительного поддержания в крови терапевтических активных концентраций ЛВ. Пролонгирующим компонентам предъявляются дополнительные требования необходимости поддержания оптимального уровня ЛВ в крови, а также отсутствие резких колебаний его концентрации [<xref ref-type="bibr" rid="cit22">22</xref>].Стабилизирующие ВВ (желатоза, производные мети л целлюлозы, твин 80, поливинилпирролидон, бентониты и др.) имеют большое значение для таких гетерогенных систем как эмульсии и суспензии, которые, в свою очередь, широко востребованы в изготовлении лекарственных препаратов из труднорастворимых и нерастворимых лекарственных средств. Необходимой также является стабилизация ЛВ как химических соединений различной природы. Дополнительно под стабилизацией может подразумеваться устойчивость лекарственных препаратов к микробной контаминации [<xref ref-type="bibr" rid="cit23">23</xref>].ВВ, улучшающие смачиваемость и водопроницаемость (ПВП, твин 80, другие ПАВ) — солюбилизаторы. ВВ данной группы применяются с целью увеличения растворимости труднорастворимых или практически нерастворимых ЛВ. Свойства и фармакологическая активность ЛВ определяются как особенностями их взаимодействия с рецепторами и ферментами, так и их водной растворимостью. Помимо взаимодействия с молекулами воды, растворимость ЛВ определяется также свойствами образующегося комплекса ЛВ—ВВ и, в этой связи, изменение растворимости может быть неоднозначным. Взаимодействие между составными частями ЛФ может носить как характер химических связей с энергией 40—140 ккал/моль (силы Ван-дер-Ваальса), так и характер электростатического притяжения, обусловленного полярностью и возникновением водородных мостиков с энергией порядка от 0,5 до 10 ккал/ моль. Таким образом, смешанный характер взаимодействия между атомами, молекулами и ионами составных частей ЛФ обуславливает её новые физико-химические свойства. Это отражается в изменении растворимости, коэффициента диффузии, коэффициента липидноводного распределения, и как следствие — в изменении проникающей способности действующего вещества через биологические мембраны [<xref ref-type="bibr" rid="cit24">24</xref>]. Таким образом, введение солюбилизаторов в состав ЛФ изменяет БД лекарственного соединения [<xref ref-type="bibr" rid="cit25">25</xref>]. Дополнительно использование солюбилизаторов может использоваться для уменьшения дозировки ЛВ за счёт более быстрого и полного всасывания препарата [<xref ref-type="bibr" rid="cit26">26</xref>].</p><p>Поверхностно активные вещества (ПАВ) — амфифильные молекулы, которые накапливаются в пространстве между гидрофобными и гидрофильными соединениями и снижают поверхностное натяжение. Из-за присутствия и гидрофильных, и гидрофобных областей, ПАВ обычно используются в качестве эмульгаторов, солюбилизаторов, детергентов и веществ, улучшающих смачивание. Различают ионные и неионогенные ПАВ. Увеличенная гидрофобность и отсутствие заряда делают неионогенные ПАВ менее токсичными для биологических мембран по срав нению с ионными. Кроме того, неионогенные ПАВ являются более эффективными солюбилизаторами нерастворимых в воде ЛВ [27, 28]. Ряд работ посвящён исследованию проницаемости биологических мембран под воздействием таких ПАВ, как: натрия лаурилсульфат [<xref ref-type="bibr" rid="cit29">29</xref>], твин 80 [<xref ref-type="bibr" rid="cit30">30</xref>], твин 20 [<xref ref-type="bibr" rid="cit31">31</xref>], плюроник P85 [<xref ref-type="bibr" rid="cit32">32</xref>], плюроник L61 [<xref ref-type="bibr" rid="cit33">33</xref>], кремофор EL [<xref ref-type="bibr" rid="cit30">30</xref>], кремофор RH40 [<xref ref-type="bibr" rid="cit34">34</xref>], лецитины и стеролы подобные фосфолипидам [<xref ref-type="bibr" rid="cit24">24</xref>].</p><p>Помимо прочего, широкое применение в качестве солюбилизаторов находят β-циклодекстрины (БЦД) [<xref ref-type="bibr" rid="cit35">35</xref>]. Хотя БЦД и являются гидрофильными (так же как их комплексы), их растворимость в воде относительно низкая. Причина этого факта связана с высокой энергией кристаллической решетки [<xref ref-type="bibr" rid="cit36">36</xref>], а также с внутримолекулярными водородными связями, которые препятствуют взаимодействию с молекулами воды (сольватации). Для преодоления данного ограничения были синтезированы производные БЦД путём ввода заместителей в определённые положения глюкозных колец, что приводило к снижению количества внутримолекулярных водородных связей и, как следствие, к увеличению растворимости. Среди типичных примеров таких производных можно выделить метил-БЦД, гидроксипропил-БЦД и сульфобутиловый эфир БЦД [<xref ref-type="bibr" rid="cit37">37</xref>]. Однако помимо высокой растворимости такая модификация БЦД может часто приводить к увеличению токсичности. Так, из приведённых выше производных БЦД наиболее безопасными являются гидрокси-пропил-БЦД и сульфобутиловый эфир БЦД [<xref ref-type="bibr" rid="cit36">36</xref>]. Кроме того, было показано, что фармакокинетические параметры многих ЛВ практически не изменяются после их совместного парентерального введения с данными производными БЦД [<xref ref-type="bibr" rid="cit38">38</xref>]. Общий механизм реакции комплексообразования включает экзотермическое взаимодействие между молекулами ЛВ с внутренней полостью циклодекстрина (ЦД) (что характеризуется отрицательным значением энтальпии) и замещение молекул воды во внутренней полости ЦД молекулой ЛВ (что характеризуется отрицательной энтропией). Кроме того, присутствие небольших количеств гидрофильных полимеров (таких как ПВП) или определённых солей (к примеру, натрия ацетата либо натриевой соли салициловой кислоты) вместе с БЦД, как было показано ранее, стабилизировало комплексы ЛВ—ЦД посредством увеличения эффективности взаимодействий ЛВ с ЦД либо формированием растворимых в воде комплексов ЛВ—ЦД [<xref ref-type="bibr" rid="cit37">37</xref>]. Также было установлено, что гидрофильные полимеры могут вызывать состояние перенасыщенности раствора Л В [<xref ref-type="bibr" rid="cit39">39</xref>]. С целью увеличения растворимости БЦД и использования для стабилизации комплексов ЛВ—ЦД, были синтезированы и изучены полимеры на основе декстранов с включёнными молекулами БЦД [<xref ref-type="bibr" rid="cit38">38</xref>]. Такой подход позволил увеличить растворимость полученных комплексов по сравнению с БЦД, а также избежать стерических затруднений при «раскрытии» молекул ЦД. Необходимо также упомянуть, что FDA разрешает применение декстрана в качестве пищевой добавки.</p><p>Корригенты (сиропы, полисахариды, эфирные масла) используются для возможности исправлять вкус, цвет и запах лекарственных средств. Данная группа веществ используется, в основном, в детской практике [<xref ref-type="bibr" rid="cit40">40</xref>].Стоит отметить, что чёткой принадлежности вещества к той или иной группе может не быть. Это связано с тем, что одно и то же вещество часто может использоваться в разных качествах [<xref ref-type="bibr" rid="cit41">41</xref>].</p><p>В настоящее время в качестве ВВ часто используют ВМС как синтетического, так и природного происхождения. Полимеры природного происхождения образуют части животных клеток, белков, углеводов, нуклеиновых кислот и, в этой связи, широко используются при изготовлении различных ЛФ, в некоторых случаях играя ключевую роль в изменении скорости высвобождения ЛВ [<xref ref-type="bibr" rid="cit42">42</xref>]. Примерами полимеров природного происхождения, которые находят применение, могут служить полисахариды, камеди, крахмал и др. [<xref ref-type="bibr" rid="cit43">43</xref>]. Использование природных биодеградируемых полимеров остаётся актуальным ввиду их распространённости в окружающей среде, а также высокой биосовместимости и возможности простой химической модификации [<xref ref-type="bibr" rid="cit44">44</xref>].</p><p>Большое внимание среди ЛФ уделяется так называемым системам направленной доставки на основе полимерных веществ. Использование подобных систем позволяет накапливать целевое ЛВ в заданном участке ткани, органа. Подобное избирательное накопление действующих веществ в очаге поражения позволяет устранить возможное нежелательное воздействие лекарственного средства на здоровые органы и ткани, повысить его эффективность, а также снизить расход препарата [<xref ref-type="bibr" rid="cit45">45</xref>].Полисахариды широко используются при создании систем направленной доставки лекарств в качестве полиэлектролитов, образующих многомерные слои на основе различных факторов взаимодействия, таких как гидратация, внутренний состав, распределение заряда, химическая модификация и пр. Есть два основных фактора, которые делают полисахариды как природного, так и синтетического происхождения важным материалом, используемым в бионанотехнологии: (1) гликозидные связи, которые могут быть легко разрушены гидролитическими ферментами и в этой связи являющиеся биодеградируемыми; (2) присутствие положительно заряженных аминогрупп (NH3+), отрицательно заряженных карбоксильных групп (COO-), либо сульфитных групп (SO3(2-)). Наличие разноименно заряженных функциональных групп в составе полисахаридов придают им свойство самоорганизующихся полиэлектролитов в процессе формирования нано или микрочастиц [<xref ref-type="bibr" rid="cit46">46</xref>].Примером полисахарида, используемого для создания систем направленного транспорта, является хитозан [<xref ref-type="bibr" rid="cit47">47</xref>], представляющий собой положительно заряженный полисахарид. Широкое распространение хитозана обусловлено его высокой биосовместимостью, биодеградацией, невысокой токсичностью, а также доступностью и невысокой стоимостью [<xref ref-type="bibr" rid="cit48">48</xref>]. К отличительным особенностям хитозана относят высокую плотность положительного заряда, обусловленную протонированием аминогрупп в его структурной цепи. Таким образом, принимая во внимание отрицательный заряд слизистых оболочек, созданы системы направленной доставки лекарств [<xref ref-type="bibr" rid="cit49">49</xref>], основанные на мукоадгезивных свойствах хитозана.</p><p>В последнее десятилетие особый интерес представляют т.н. полиэлектролитные комплексы (ПЭК), образующиеся в результате электростатического взаимодействия разноименно заряженных природных биополимеров. С учётом специфики применения созданы разные ЛФ ПЭК на основе хитозана: наночастицы, микрочастицы, таблетки, гели, мембраны и проч. [<xref ref-type="bibr" rid="cit50">50</xref>]. Описаны имплантируемые системы доставки лекарств в виде мембран на основе хитозана [<xref ref-type="bibr" rid="cit51">51</xref>]. Отмечена их меньшая цитотоксичность и более низкая скорость деградации по сравнению с синтетическими материалами. Используются подобные системы доставки, изготовленные также на основе альгинатов [<xref ref-type="bibr" rid="cit52">52</xref>], а также хитозанальгинатных электролитных комплексов [<xref ref-type="bibr" rid="cit53">53</xref>].Альгинаты представляют собой природные водорастворимые линейные полисахариды, добываемые из бурых и морских водорослей. Как отмечают авторы [<xref ref-type="bibr" rid="cit54">54</xref>], содержание альгинатов в водорослях может достигать до 40% сухой массы сырья. Альгинаты состоят из чередующихся 1—4 связанных остатков a-L-гулуроновой и β-D-маннуроновой кислот. Таким образом, за счёт карбоксильных кислотных групп молекулы альгинатов приобретают отрицательный заряд и способны электростатически взаимодействовать с различными положительно заряженными катионами, образуя гели [<xref ref-type="bibr" rid="cit55">55</xref>]. Скорость высвобождения лекарственного средства подобных систем может быть изменена путём взаимодействия препарата с полимером, а также путём химической иммобилизации препарата в полимерной цепи с помощью реакционноспособных групп карбоновой кислоты [<xref ref-type="bibr" rid="cit56">56</xref>]. Данные виды гелей обычно используют для инкапсулирования водорастворимых препаратов, белков и биоактивных факторов [<xref ref-type="bibr" rid="cit57">57</xref>], например, бычьего метгемоглобина [<xref ref-type="bibr" rid="cit58">58</xref>] и бычьего сывороточного альбумина [<xref ref-type="bibr" rid="cit59">59</xref>]. Инкапсуляция белков и биологически активных факторов в ионносшитые альгинатные гели может в значительной степени повысить их эффективность и направленность действия, что было показано в обширном исследовании [<xref ref-type="bibr" rid="cit60">60</xref>]. Описаны ПЭК альгинатов с хитозаном, используемые для создания нанотрубок, нано и микрочастиц, мазей/гидрогелей, нитей и проч. [<xref ref-type="bibr" rid="cit61">61</xref>]. Используются такие ПЭК как для доставки низкомолекулярных соединений [<xref ref-type="bibr" rid="cit62">62</xref>], так и для создания систем доставки макромолекул, таких как пептиды, белки и нуклеотиды [<xref ref-type="bibr" rid="cit63">63</xref>]. Известны примеры инкапсулирования противоопухолевых [<xref ref-type="bibr" rid="cit64">64</xref>], глазных [<xref ref-type="bibr" rid="cit65">65</xref>], лёгочных [<xref ref-type="bibr" rid="cit49">49</xref>], противовоспалительных лекарственных средств [<xref ref-type="bibr" rid="cit66">66</xref>], а также антибиотиков в виде мазей [<xref ref-type="bibr" rid="cit67">67</xref>]. Отмечается также, что ПЭК на основе хитозана и альгинатов при введении в их состав плюроников в качестве поверхностно активных веществ, могут использоваться в качестве солюбилизаторов, когда целевое соединение плохо растворимо в воде [<xref ref-type="bibr" rid="cit68">68</xref>]. Показано снижение уровня глюкозы у крыс, больных диабетом, при использовании капсул для перорального введения, изготовленных на основе липоинсулина, инкапсулированного в альгинатхитозановую систему [<xref ref-type="bibr" rid="cit69">69</xref>].</p><p>Пектин представляет собой широко распространённый природный полисахарид, который является основным составляющим компонентом клеточных стенок высших растений. Состав молекул пектина отличается в зависимости от источника, что в свою очередь влияет на его функциональные свойства [<xref ref-type="bibr" rid="cit70">70</xref>], например, на желатирующую способность. Отличительным свойством пектина является возможность использовать его для создания систем направленной доставки лекарств в кишечнике [<xref ref-type="bibr" rid="cit71">71</xref>]. Такое свойство пектина обусловлено его разрушением только под действием специфических пектинолитических ферментов. Однако ввиду высокой растворимости пектина для защиты приготовленных на его основе систем доставки лекарств при прохождении желудка и тонкого кишечника используют его различные модификации [<xref ref-type="bibr" rid="cit72">72</xref>].</p><p>Для направленной доставки белков могут быть использованы системы на основе магнитных наночистиц, включённых в ПЭК полисахаридов. Отличительной особенностью таких систем доставки является стадия синтеза магнитных наночастиц, которая проводится непосредственно в матрице ПЭК. Помимо прочего, в случае использования таких систем отмечается возможность снижения их токсического эффекта по сравнению с другими магнитными наночастицами за счёт увеличения эффективности экскреции самих наночастиц [<xref ref-type="bibr" rid="cit42">42</xref>]. Исследованы биоадгезивные свойства, а также эффективность направленной доставки систем на основе магнитных частиц, включенных в состав хитозанальгинатных ПЭК [63, 73].Каррагинан является природным линейным сульфатированным полисахаридом, добываемым из красных водорослей [<xref ref-type="bibr" rid="cit74">74</xref>]. В зависимости от используемого сырья и методов экстракции, выделяют три основных типа: каппа(χ), иота(i) и лямбда(λ)-каррагинан, которые различаются по степени замещения сульфогрупп. Желатирующей способностью обладают только χ- и i- каррагинан, первый из который устойчивый и негибкий, а второй подвижный и эластичный. Принимая во внимание отрицательный заряд сульфогрупп, данный полисахарид вступает во взаимодействия с положительно заряженными молекулами, что в свою очередь может быть использовано для создания комбинированных материалов, например, на основе каррагинана и хитозана [<xref ref-type="bibr" rid="cit75">75</xref>]. В фармацевтической промышленности каррагинаны используют в качестве желатирующих, стабилизирующих агентов, а также в качестве загустителей [<xref ref-type="bibr" rid="cit41">41</xref>].</p><p>Другим полисахаридом, широко используемым для приготовления различных систем доставки лекарств, является гиалуроновая кислота [<xref ref-type="bibr" rid="cit76">76</xref>]. Данное соединение представляет собой несульфатирован ный глюкозамингликан с повторяющимися блоками дисахарида, β-1,4-D-гиалуроновой кислоты-β-1,3-N-ацетил-D-глюкозамина. Гиалуроновая кислота входит в состав соединительных, эпителиальных, а также нейрональных тканей живых организмов [<xref ref-type="bibr" rid="cit77">77</xref>]. Материалы, изготовленные на основе гиалуроновой кислоты, обладают ферментативной и коллоидной устойчивостью, низкой цитотоксичностью, варьируемыми размерами [<xref ref-type="bibr" rid="cit78">78</xref>]. Гиалуровноая кислота также используется в морфогенезе, при лечении воспалений и заживлении ран [<xref ref-type="bibr" rid="cit79">79</xref>]. Благодаря наличию в составе молекул гиалуроновой кислоты карбоксильных групп, данное соединение также широко используется для создания ПЭК с катионными биополимерами [<xref ref-type="bibr" rid="cit80">80</xref>]. Описаны композитные полимерные плёнки на основе ПЭК хитозана с гиалуроновой кислотой [<xref ref-type="bibr" rid="cit81">81</xref>]. Отмечена pH-зависимость высвобождения действующего вещества и низкая токсичность таких материалов. Разработан новый класс биологически совместимых и биодеградируемых композитных гидрогелей на основе водорастворимого хитозана и окисленной гиалуроновой кислоты либо альгинатов без добавления химически сшивающего агента [<xref ref-type="bibr" rid="cit82">82</xref>]. Отмечена возможность использования гиалуроновой кислоты в сочетании с коллагеном для формирования полувза имопроникающих сетей с последующим инкапсулированием фибробластов и хондроцитов для формирования кровеносных сосудов [<xref ref-type="bibr" rid="cit83">83</xref>].Ксантановая камедь представляет собой гетерополисахарид, вырабатываемый бактериями Xanthomonas campestris. Основная структурная цепь состоит из пяти повторяющихся углеводных остатков, двух β-D-глюкозных остатков, соединенных по первой и четвёртой позиции с основной цепью, двух маннозных остатков и глюкуроновой кислоты в боковой цепи [<xref ref-type="bibr" rid="cit84">84</xref>]. Ксантановую камедь относят к природным анионным полиэлектролитам ввиду наличия остатков уксусной и пировиноградной кислот. С 1968 г. FDA (Управление по контролю пищевых продуктами и лекарственных препаратов, США) не ограничивает количественное использование ксантановой камеди в пищевой и фармацевтической промышленности. Это связано, прежде всего, с отсутствием токсичности и природным происхождением данного соединения. Известны примеры использования ксантановой камеди для приготовления таких систем с pH-зависимым высвобождением включенных в них веществ [<xref ref-type="bibr" rid="cit85">85</xref>]. Также ксантановая камедь может быть использована для приготовления криогелей, которые используются, в частности, для инкапсулирования различных ферментов [<xref ref-type="bibr" rid="cit86">86</xref>].Другим примером экзополисахарида является геллановая камедь, которая вырабатывается бактериями Pseudomonas elodeac [<xref ref-type="bibr" rid="cit87">87</xref>]. Структурная цепь геллановой камеди состоит из повторяющихся блоков глюкозы, глюкуроновой кислоты и рамнозы в соотношении 2:1:1. При растворении в воде приобретает отрицательный заряд. Ввиду биосовместимости и невысокой токсичности геллановая камедь используется как в пищевой (там же), так и тканевой инженерии [<xref ref-type="bibr" rid="cit88">88</xref>]. Особенностью геллановой камеди является температурная зависимость её желатирующих свойств [<xref ref-type="bibr" rid="cit89">89</xref>].Гуммиарабик, или аравийская камедь, представляет собой сложный полисахарид, состоящий из смеси кальциевых, магниевых и калиевых солей полисахаридных кислот, структурная цепь которых состоит из 1, 3-связанных β-D-галактопиранозильных блоков с различными белками [<xref ref-type="bibr" rid="cit90">90</xref>]. Как природный гликопротеин с высокой растворимостью и низкой вязкостью даже в высоких концентрациях, гуммиарабик является превосходным эмульгатором, а также используется для приготовления систем направленной доставки на основе ПЭК, ввиду его высокого отрицательного заряда в нейтральных и слабокислотных растворах [<xref ref-type="bibr" rid="cit90">90</xref>].</p><p>Коллаген является одним из самых распространённых белков на земле [<xref ref-type="bibr" rid="cit91">91</xref>]. Известны различные ЛФ на основе коллагена. Применяют коллаген как самостоятельное лекарственное средство (также в смеси с другими лекарственными веществами), так и в качестве вспомогательного вещества. Ввиду возможности создания материалов различной пространственной ориентации и формы на основе коллагена, его используют для создания таблетированных ЛФ, различных покрытий и вставок, частиц, в основах мазей и суппозиториев, в качестве эмульгатора и стабилизатора, а также при создании различных ЛФ направленной доставки. На основе коллагена in vitro созданы 3D — модели мембран, клеток и тканей, которые могут быть использованы для визуализации и изучения процессов жизнедеятельности организма и различных патологий [<xref ref-type="bibr" rid="cit91">91</xref>].</p><p>Одним из наиболее доступных, возобновляемых и разносторонних природных полимеров является крахмал [<xref ref-type="bibr" rid="cit92">92</xref>], который состоит из двух полисахаридов: амилозы (структура с неразветвлённой цепью, к которой остатки глюкозы присоединены в α-1,4-положениях) и амилопектина (разветвленная структурная цепь, к которой остатки глюкозы присоединены в точках разветвления по α-1,6-положениям).Крахмал используется как при создании твёрдых ЛФ, так и в качестве стабилизатора суспензий и эмульсий. На основе карбоксиметилкрахмала создана ЛФ мезаламина для его направленной доставки в кишечник [<xref ref-type="bibr" rid="cit93">93</xref>]. Отличительной особенностью данной ЛФ является pH-устойчивость, невысокая стоимость сырья и простота изготовления. При использовании карбоксиметилкрахмала с высоким содержанием амилозы в качестве ВВ созданы таблетированные ЛФ с контролируемым высвобождением активного компонента [<xref ref-type="bibr" rid="cit94">94</xref>].</p><p>Отмечается использование лецитинов, особенно фракций с высоким содержанием фосфатидилхоли на как в качестве самостоятельных лекарственных средств, так и в качестве ВВ для создания различных ЛФ [<xref ref-type="bibr" rid="cit93">93</xref>], таких как липосомы, мицеллы и эмульсии. Лецитины используют для повышения резорбции, в качестве солюбилизаторов, а также для снижения токсичности [<xref ref-type="bibr" rid="cit95">95</xref>].Также, в качестве ВВ при изготовлении различных ЛФ широко применяются синтетические полимеры: полипропиленгликоль (ПЭГ) и его сополимеры, полиакриловая кислота, поливиниловый спирт (ПВС), полиэтиленоксид различных молекулярных масс (ПЭО), поливинилпирролидон (ПВП), эфиры целлюлозы, твин80 и другие. Среди эфиров целлюлозы карбоксиметилцеллюлоза и её натриевая и калиевая соли являются одними из наиболее востребованных в области биомедицинских приложений [<xref ref-type="bibr" rid="cit96">96</xref>].</p><p>ПЭГ широко используется в качестве материала оболочек ввиду его биосовместимости и растворимости в воде. M.Oishi и соавт. [<xref ref-type="bibr" rid="cit97">97</xref>] описали использование ПЭГилированного наногеля для доставки доксорубицина. Данный наногель построен на основе сшитого, рН-зависимого полиаминного ядра со связанными цепями ПЭГ. При высоком или нейтральном значении рН ПЭГ-гель имеет компактную структуру. Однако при уменьшении рН наблюдалось увеличение объёма полимера с последующим высвобождением ЛВ. W.S.Shim и соавторы [<xref ref-type="bibr" rid="cit98">98</xref>] синтезировали рН и термозависимый блочный сополимер добавлением рН-зависимого олигомера сульфаметазина к термозависимому блочному сополимеру на основе ПЭГ. При рН около 8,0 данный сульфонамидмодифицированный блочный сополипер в течение примерно 2 ч при температуре тела представляет собой золь; в то же время при понижении уровня рН до физиологических значений порядка 7,4 и температуре около 37°С достаточно быстро (около 5 мин) образуется гель. В работе [<xref ref-type="bibr" rid="cit99">99</xref>] описан синтез биосовместимых мицелл и везикул с рН-зависимой проницаемостью. Физико-химические и функциональные особенности дополняют потенциальную ценность кислоторасщепляемого полибутилакрилата, покрытого поли(ПЭГ-акрилатом), в качестве носителей для доставки гидрофобных ЛВ в места пониженной кислотности [<xref ref-type="bibr" rid="cit100">100</xref>].</p><p>Авторы [<xref ref-type="bibr" rid="cit101">101</xref>] синтезировали гидрогель на основе этил-2-ацетил-3-оксо-4-пентоноата (4-ацетила-кроилэтилацетат) и акриловой кислоты. Отмечено, что температура объёмного фазового перехода находилась в диапазоне от 50 до 62°С в зависимости от условий синтеза, а критическое значение pH для подобного объёмного фазового изменения составило 9,5. На основе материалов такого класса синтезированы нанокапсулы для направленной доставки лекарств [<xref ref-type="bibr" rid="cit102">102</xref>]. Авторы [<xref ref-type="bibr" rid="cit103">103</xref>] синтезировали pH и температурозависимый гидрогель, который можно использовать для доставки биоактивных молекул в область инфаркта миокарда, что было показано в модельных опытах на крысах. Такая система может улучшить терапевтические методы ангиогенеза за счёт предоставления пространственно-временной контролируемой доставки ангиогенного фактора роста. Также подобный материал был использован для направленной доставки фибробластного фактора роста к месту ишемического инфаркта в модельном эксперименте на животных. Показано улучшение ангиогенеза и увеличение терапевтического эффекта по отношению к сердечной функции и периферическому кровотоку в сравнении с введением солевого раствора [<xref ref-type="bibr" rid="cit103">103</xref>].Таким образом, основываясь на опубликованных данных, можно заключить, что существует обширный выбор вспомогательных веществ, используемых с целью создания ЛФ направленной доставки активного компонента с заданными свойствами. Выбор ВВ является одним из факторов, влияющих на биологическую доступность ЛВ. Также, потенциальная вариативность используемых материалов может быть дополнена широким спектром технологических приёмов изготовления ЛФ.</p></body><back><ref-list><title>References</title><ref id="cit1"><label>1</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Zhang M.-Q., Wilkinson B. Drug discovery beyond the „rule-of-five“. Curr. Opin. Biotechnol. 2007; 18: 6: 478-488.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zhang M.-Q., Wilkinson B. Drug discovery beyond the „rule-of-five“. Curr. Opin. Biotechnol. 2007; 18: 6: 478-488.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit2"><label>2</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Vistoli G., Pedretti A., Testa B. Assessing drug-likeness - what are we missing? Drug Discovery Today. 2008; 13: 7-8: 285-294.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Vistoli G., Pedretti A., Testa B. Assessing drug-likeness - what are we missing? Drug Discovery Today. 2008; 13: 7-8: 285-294.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit3"><label>3</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Di L., Fish P. V., Mano T. Bridging solubility between drug discovery and development. Drug Discovery Today. 2012; 17: 9: 486-495.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Di L., Fish P. V., Mano T. Bridging solubility between drug discovery and development. Drug Discovery Today. 2012; 17: 9: 486-495.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit4"><label>4</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Kang H.C., Huh K.M., Bae Y.H. Polymeric nucleic acid carriers: current issues and novel design approaches. J. Controlled Release. 2012; 164: 3: 256-264.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kang H.C., Huh K.M., Bae Y.H. Polymeric nucleic acid carriers: current issues and novel design approaches. J. Controlled Release. 2012; 164: 3: 256-264.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit5"><label>5</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Prakash S., Malhotra M., Shao W. et al. Polymeric nanohybrids and functionalized carbon nanotubes as drug delivery carriers for cancer therapy. Adv. Drug Deliver. Rev. 2011; 63: 14: 1340-1351.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Prakash S., Malhotra M., Shao W. et al. Polymeric nanohybrids and functionalized carbon nanotubes as drug delivery carriers for cancer therapy. Adv. Drug Deliver. Rev. 2011; 63: 14: 1340-1351.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit6"><label>6</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Felber A.E., Bay?-Puxan N., Deleavey G.F. et. al. The interactions of amphiphilic antisense oligonucleotides with serum proteins and their effects on in vitro silencing activity. Biomaterials. 2012; 33: 25: 5955-5965.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Felber A.E., Bay?-Puxan N., Deleavey G.F. et. al. The interactions of amphiphilic antisense oligonucleotides with serum proteins and their effects on in vitro silencing activity. Biomaterials. 2012; 33: 25: 5955-5965.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit7"><label>7</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Yamashita F., Hashida M. Pharmacokinetic considerations for targeted drug delivery. Adv. Drug Deliver. Rev. 2013; 65: 1: 139-147.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Yamashita F., Hashida M. Pharmacokinetic considerations for targeted drug delivery. Adv. Drug Deliver. Rev. 2013; 65: 1: 139-147.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit8"><label>8</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hunter A.C., Elsom J, Wibroe P.P., Moghimi S.M. Polymeric particulate technologies for oral drug delivery and targeting: a pathophysiological perspective. Nanomedicine: Nanotechnology, Biol. Med. 2012; 8: S5-S20.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hunter A.C., Elsom J, Wibroe P.P., Moghimi S.M. Polymeric particulate technologies for oral drug delivery and targeting: a pathophysiological perspective. Nanomedicine: Nanotechnology, Biol. Med. 2012; 8: S5-S20.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit9"><label>9</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Yousefi A., Storm G., Schiffelers R., Mastrobattista E. Trends in polymeric delivery of nucleic acids to tumors. J. Controlled Release. 2013; 170: 2: 209-218.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Yousefi A., Storm G., Schiffelers R., Mastrobattista E. Trends in polymeric delivery of nucleic acids to tumors. J. Controlled Release. 2013; 170: 2: 209-218.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit10"><label>10</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Chen M.-C, Mi F.-L., Liao Z.-X. et. al. Recent advances in chitosan-based nanoparticles for oral delivery of macromolecules. Adv. Drug Delivery Rev. 2013; 65: 6: 865-879.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Chen M.-C, Mi F.-L., Liao Z.-X. et. al. Recent advances in chitosan-based nanoparticles for oral delivery of macromolecules. Adv. Drug Delivery Rev. 2013; 65: 6: 865-879.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit11"><label>11</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Lalatsa A., Schätzlein A.G., Mazza M. et. al. Amphiphilic poly (l-amino acids) - new materials for drug delivery. J. Controlled Release. 2012; 161: 2: 523-536.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Lalatsa A., Schätzlein A.G., Mazza M. et. al. Amphiphilic poly (l-amino acids) - new materials for drug delivery. J. Controlled Release. 2012; 161: 2: 523-536.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit12"><label>12</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Li J., Huo M., Wang J., Zhou J. et. al. Redox-sensitive micelles self-assembled from amphiphilic hyaluronic acid-deoxycholic acid conjugates for targeted intracellular delivery of paclitaxel. Biomater. 2012; 33: 7: 2310-2320.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Li J., Huo M., Wang J., Zhou J. et. al. Redox-sensitive micelles self-assembled from amphiphilic hyaluronic acid-deoxycholic acid conjugates for targeted intracellular delivery of paclitaxel. Biomater. 2012; 33: 7: 2310-2320.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit13"><label>13</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Mishra D., Kang H.C., Bae Y.H. Reconstitutable charged polymeric (PLGA) 2-b-PEI micelles for gene therapeutics delivery. Biomater. 2011; 32: 15: 3845-3854.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Mishra D., Kang H.C., Bae Y.H. Reconstitutable charged polymeric (PLGA) 2-b-PEI micelles for gene therapeutics delivery. Biomater. 2011; 32: 15: 3845-3854.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit14"><label>14</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Chen M-L. Lipid excipients and delivery systems for pharmaceutical development: a regulatory perspective. Adv. Drug Delivery Rev. 2008; 60: 6: 768-777.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Chen M-L. Lipid excipients and delivery systems for pharmaceutical development: a regulatory perspective. Adv. Drug Delivery Rev. 2008; 60: 6: 768-777.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit15"><label>15</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Pilcer G., Amighi K. Formulation strategy and use of excipients in pulmonary drug delivery. Int. J. Pharm. 2010; 392: 1: 1-19.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Pilcer G., Amighi K. Formulation strategy and use of excipients in pulmonary drug delivery. Int. J. Pharm. 2010; 392: 1: 1-19.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit16"><label>16</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Алексеев К.В., Тихонова Н.В., Блынская Е.В. и др. Технология повышения биологической и фармацевстической доступности лекарственных веществ. Вестник новых медицинских технологий. 2012; 9: 4: 43-47.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Алексеев К.В., Тихонова Н.В., Блынская Е.В. и др. Технология повышения биологической и фармацевстической доступности лекарственных веществ. Вестник новых медицинских технологий. 2012; 9: 4: 43-47.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit17"><label>17</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Lee C.H., Kim J.-H., Lee H.J. et. al. The generation of iPS cells using non-viral magnetic nanoparticlebased transfection. Biomater. 2011; 32: 28: 6683-6691.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Lee C.H., Kim J.-H., Lee H.J. et. al. The generation of iPS cells using non-viral magnetic nanoparticlebased transfection. Biomater. 2011; 32: 28: 6683-6691.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit18"><label>18</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Shirsand S.B., Ramani R.G., Swamy P.V Novel co-processed superdisintegrants in the design of fast dissolving tablets. Int. J. Pharma &amp; Bio Sciences. 2010; 1: 1: 1-12.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Shirsand S.B., Ramani R.G., Swamy P.V Novel co-processed superdisintegrants in the design of fast dissolving tablets. Int. J. Pharma &amp; Bio Sciences. 2010; 1: 1: 1-12.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit19"><label>19</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hamid K.A., Katsumi H., Sakane T., Yamamoto A. The effects of common solubilizing agents on the intestinal membrane barrier functions and membrane toxicity in rats. Int. J. Pharm. 2009; 379: 1: 100-108.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hamid K.A., Katsumi H., Sakane T., Yamamoto A. The effects of common solubilizing agents on the intestinal membrane barrier functions and membrane toxicity in rats. Int. J. Pharm. 2009; 379: 1: 100-108.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit20"><label>20</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Beig A., Miller J.M., Dahan A. Accounting for the solubility - permeability interplay in oral formulation development for poor water solubility drugs: the effect of PEG-400 on carbamazepine absorption. Eur. J. Pharm. Biopharm. 2012; 81: 2: 386-391.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Beig A., Miller J.M., Dahan A. Accounting for the solubility - permeability interplay in oral formulation development for poor water solubility drugs: the effect of PEG-400 on carbamazepine absorption. Eur. J. Pharm. Biopharm. 2012; 81: 2: 386-391.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit21"><label>21</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Jannin V., Rodier J-D., Musakhanian J. Polyoxylglycerides and glycerides: Effects of manufacturing parameters on API stability, excipient functionality and processing. Int. J. Pharm. 2014; 466: 1: 109-121.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Jannin V., Rodier J-D., Musakhanian J. Polyoxylglycerides and glycerides: Effects of manufacturing parameters on API stability, excipient functionality and processing. Int. J. Pharm. 2014; 466: 1: 109-121.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit22"><label>22</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Baki G., Bajdik J., Kelemen A., Pintye-H?di K. Formulation of a solid intravaginal matrix system to prolong the pH-decreasing effect of lactic acid. J. Drug Delivery Sci. Technol. 2009; 19: 2: 133-137.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Baki G., Bajdik J., Kelemen A., Pintye-H?di K. Formulation of a solid intravaginal matrix system to prolong the pH-decreasing effect of lactic acid. J. Drug Delivery Sci. Technol. 2009; 19: 2: 133-137.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit23"><label>23</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hu S.-G., Jou C-H., Yang M. Protein adsorption, fibroblast activity and antibacterial properties of poly (3-hydroxybutyric acid-co-3-hydroxy valeric acid) grafted with chitosan and chitooligosaccharide after immobilized with hyaluronic acid. Biomater. 2003; 24: 16: 2685-2693.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hu S.-G., Jou C-H., Yang M. Protein adsorption, fibroblast activity and antibacterial properties of poly (3-hydroxybutyric acid-co-3-hydroxy valeric acid) grafted with chitosan and chitooligosaccharide after immobilized with hyaluronic acid. Biomater. 2003; 24: 16: 2685-2693.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit24"><label>24</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Goole J., Lindley D.J., Roth W. et. al. The effects of excipients on transporter mediated absorption. Int. J. Pharm. 2010; 393: 1: 17-31.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Goole J., Lindley D.J., Roth W. et. al. The effects of excipients on transporter mediated absorption. Int. J. Pharm. 2010; 393: 1: 17-31.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit25"><label>25</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Carrier R.L., Miller L.A., Ahmed I. The utility of cyclodextrins for enhancing oral bioavailability. J. Controlled Release. 2007; 123: 2: 78-99.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Carrier R.L., Miller L.A., Ahmed I. The utility of cyclodextrins for enhancing oral bioavailability. J. Controlled Release. 2007; 123: 2: 78-99.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit26"><label>26</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Sarode A.L., Wang P., Obara S., Worthen D.R. Supersaturation, nucleation, and crystal growth during single-and biphasic dissolution of amorphous solid dispersions: Polymer effects and implications for oral bioavailability enhancement of poorly water soluble drugs. Eur. J. Pharm. Biopharm. 2014; 86: 3: 351-360.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sarode A.L., Wang P., Obara S., Worthen D.R. Supersaturation, nucleation, and crystal growth during single-and biphasic dissolution of amorphous solid dispersions: Polymer effects and implications for oral bioavailability enhancement of poorly water soluble drugs. Eur. J. Pharm. Biopharm. 2014; 86: 3: 351-360.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit27"><label>27</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bhatt D., Maheria K., Parikh J. Mixed system of ionic liquid and non-ionic surfactants in aqueous media: Surface and thermodynamic properties. J. Chem. Thermodyn. 2014; 74: 184-192.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bhatt D., Maheria K., Parikh J. Mixed system of ionic liquid and non-ionic surfactants in aqueous media: Surface and thermodynamic properties. J. Chem. Thermodyn. 2014; 74: 184-192.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit28"><label>28</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ouellet-Plamondon C.M., Stasiak J., Al-Tabbaa A. The effect of cationic, non-ionic and amphiphilic surfactants on the intercalation of bentonite. Colloids Surf., A: Physicochem. Eng. Aspects. 2014; 444: 330-337.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ouellet-Plamondon C.M., Stasiak J., Al-Tabbaa A. The effect of cationic, non-ionic and amphiphilic surfactants on the intercalation of bentonite. Colloids Surf., A: Physicochem. Eng. Aspects. 2014; 444: 330-337.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit29"><label>29</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Rege B.D., Yu L.X., Hussain A.S., Polli J.E. Effect of common excipients on Caco-2 transport of low-permeability drugs. J. Pharm. Sci. 2001; 90: 11: 1776-1786.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Rege B.D., Yu L.X., Hussain A.S., Polli J.E. Effect of common excipients on Caco-2 transport of low-permeability drugs. J. Pharm. Sci. 2001; 90: 11: 1776-1786.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit30"><label>30</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Wagner D., Spahn-Langguth H., Hanafy A. et. al. Intestinal drug efflux: formulation and food effects. Adv. Drug Deliver. Rev. 2001; 50: S13-S31.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Wagner D., Spahn-Langguth H., Hanafy A. et. al. Intestinal drug efflux: formulation and food effects. Adv. Drug Deliver. Rev. 2001; 50: S13-S31.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit31"><label>31</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Yamagata T., Kusuhara H., Morishita M. et. al. Improvement of the oral drug absorption of topotecan through the inhibition of intestinal xenobiotic efflux transporter, breast cancer resistance protein, by excipients. Drug Metab. Dispos. 2007; 35: 7: 1142-1148.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Yamagata T., Kusuhara H., Morishita M. et. al. Improvement of the oral drug absorption of topotecan through the inhibition of intestinal xenobiotic efflux transporter, breast cancer resistance protein, by excipients. Drug Metab. Dispos. 2007; 35: 7: 1142-1148.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit32"><label>32</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Batrakova E.V., Li S., Li Y. et. al. Effect of pluronic P85 on ATPase activity of drug efflux transporters. Pharm. Res. 2004; 21: 12: 2226-2233.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Batrakova E.V., Li S., Li Y. et. al. Effect of pluronic P85 on ATPase activity of drug efflux transporters. Pharm. Res. 2004; 21: 12: 2226-2233.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit33"><label>33</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Krylova O.O., Pohl P. Ionophoric activity of pluronic block copolymers. Biochem. 2004; 43: 12: 3696-3703.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Krylova O.O., Pohl P. Ionophoric activity of pluronic block copolymers. Biochem. 2004; 43: 12: 3696-3703.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit34"><label>34</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Tayrouz Y. Pharmacokinetic and pharmaceutic interaction between digoxin and Cremophor RH40. Clin. Pharmacol. Ther. 2003; 73: 5: 397-405.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Tayrouz Y. Pharmacokinetic and pharmaceutic interaction between digoxin and Cremophor RH40. Clin. Pharmacol. Ther. 2003; 73: 5: 397-405.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit35"><label>35</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Challa R., Ahuja A., Ali J., Khar R.K. Cyclodextrins in drug delivery: an updated review. Aaps Pharmscitech. 2005; 6: 2: E329-E357.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Challa R., Ahuja A., Ali J., Khar R.K. Cyclodextrins in drug delivery: an updated review. Aaps Pharmscitech. 2005; 6: 2: E329-E357.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit36"><label>36</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Loftsson T., Brewster M.E. Pharmaceutical applications of cyclodextrins: basic science and product development. J. Pharm. Pharmacol. 2010; 62: 11: 1607-1621.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Loftsson T., Brewster M.E. Pharmaceutical applications of cyclodextrins: basic science and product development. J. Pharm. Pharmacol. 2010; 62: 11: 1607-1621.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit37"><label>37</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Brewster M. E., Vandecruys R., Peeters J. et. al. Comparative interaction of 2-hydroxypropyl-ß-cyclodextrin and sulfobutylether-ß-cyclodextrin with itraconazole: phase-solubility behavior and stabilization of supersaturated drug solutions. Eur. J. Pharm. Sci. 2008; 34: 2: 94-103.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Brewster M. E., Vandecruys R., Peeters J. et. al. Comparative interaction of 2-hydroxypropyl-ß-cyclodextrin and sulfobutylether-ß-cyclodextrin with itraconazole: phase-solubility behavior and stabilization of supersaturated drug solutions. Eur. J. Pharm. Sci. 2008; 34: 2: 94-103.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit38"><label>38</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Kurkov S. V., Madden D.E., Carr D., Loftsson T. The effect of parenterally administered cyclodextrins on the pharmacokinetics of coadministered drugs. J. Pharm. Sci. 2012; 101: 12: 4402-4408.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kurkov S. V., Madden D.E., Carr D., Loftsson T. The effect of parenterally administered cyclodextrins on the pharmacokinetics of coadministered drugs. J. Pharm. Sci. 2012; 101: 12: 4402-4408.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit39"><label>39</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Di Cagno M., Luppi B. Drug «supersaturation» states induced by polymeric micelles and liposomes: A mechanistic investigation into permeability enhancements. Eur. J. Pharm. Sci. 2013; 48: 4: 775-780.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Di Cagno M., Luppi B. Drug «supersaturation» states induced by polymeric micelles and liposomes: A mechanistic investigation into permeability enhancements. Eur. J. Pharm. Sci. 2013; 48: 4: 775-780.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit40"><label>40</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Suzuki H., Onishi H., Hisamatsu S. et. al. Acetaminophen-containing chewable tablets with suppressed bitterness and improved oral feeling. Int. J. Pharm. 2004; 278: 1: 51 - 61.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Suzuki H., Onishi H., Hisamatsu S. et. al. Acetaminophen-containing chewable tablets with suppressed bitterness and improved oral feeling. Int. J. Pharm. 2004; 278: 1: 51 - 61.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit41"><label>41</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Yu G., Yang B., Ren W. et. al. A comparative analysis of four kinds of polysaccharides purified from Furcellaria lumbricalis. J. Ocean Univ. China. 2007; 6: 1: 16-20.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Yu G., Yang B., Ren W. et. al. A comparative analysis of four kinds of polysaccharides purified from Furcellaria lumbricalis. J. Ocean Univ. China. 2007; 6: 1: 16-20.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit42"><label>42</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Dai S., Ravi P., Tam K.C. pH-Responsive polymers: synthesis, properties and applications. Soft Matter. 2008; 4: 3: 435-449.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Dai S., Ravi P., Tam K.C. pH-Responsive polymers: synthesis, properties and applications. Soft Matter. 2008; 4: 3: 435-449.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit43"><label>43</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Luo Y., Teng Z., Wang X., Wang Q. Development of carboxymethyl chitosan hydrogel beads in alcohol-aqueous binary solvent for nutrient delivery applications. Food Hydrocolloids. 2013; 31: 2: 332-339.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Luo Y., Teng Z., Wang X., Wang Q. Development of carboxymethyl chitosan hydrogel beads in alcohol-aqueous binary solvent for nutrient delivery applications. Food Hydrocolloids. 2013; 31: 2: 332-339.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit44"><label>44</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Sonia T.A., Sharma C.P. An overview of natural polymers for oral insulin delivery. Drug Discovery Today. 2012; 17: 13: 784-792.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sonia T.A., Sharma C.P. An overview of natural polymers for oral insulin delivery. Drug Discovery Today. 2012; 17: 13: 784-792.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit45"><label>45</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Aryal M., Arvanitis C.D., Alexander P.M., McDannold N. Ultrasound-mediated blood-brain barrier disruption for targeted drug delivery in the central nervous system. Adv. Drug Deliver. Rev. 2014; 72: 94-109.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Aryal M., Arvanitis C.D., Alexander P.M., McDannold N. Ultrasound-mediated blood-brain barrier disruption for targeted drug delivery in the central nervous system. Adv. Drug Deliver. Rev. 2014; 72: 94-109.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit46"><label>46</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Raveendran S., Yoshida Y., Maekawa T., Kumar D.S. Pharmaceutically versatile sulfated polysaccharide based bionano platforms. Nanomedicine: Nanotechnology, Biology and Medicine. 2013; 9: 5: 605-626.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Raveendran S., Yoshida Y., Maekawa T., Kumar D.S. Pharmaceutically versatile sulfated polysaccharide based bionano platforms. Nanomedicine: Nanotechnology, Biology and Medicine. 2013; 9: 5: 605-626.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit47"><label>47</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Jayakumar R., Prabaharan M., Sudheesh Kumar P.T. et. al. Biomaterials based on chitin and chitosan in wound dressing applications. Biotechnol. Adv. 2011; 29: 3: 322-337.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Jayakumar R., Prabaharan M., Sudheesh Kumar P.T. et. al. Biomaterials based on chitin and chitosan in wound dressing applications. Biotechnol. Adv. 2011; 29: 3: 322-337.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit48"><label>48</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Kean T., Thanou M. Biodegradation, biodistribution and toxicity of chitosan. Adv. Drug Deliver. Rev. 2010; 62: 1: 3-11.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kean T., Thanou M. Biodegradation, biodistribution and toxicity of chitosan. Adv. Drug Deliver. Rev. 2010; 62: 1: 3-11.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit49"><label>49</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Elzatahry A.A., Mohy Eldin M.S., Soliman E.A., Hassan E.A. Evaluation of alginate-chitosan bioadhesive beads as a drug delivery system for the controlled release of theophylline. J. Appl. Polym. Sci. 2009; 111: 5: 2452-2459.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Elzatahry A.A., Mohy Eldin M.S., Soliman E.A., Hassan E.A. Evaluation of alginate-chitosan bioadhesive beads as a drug delivery system for the controlled release of theophylline. J. Appl. Polym. Sci. 2009; 111: 5: 2452-2459.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit50"><label>50</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Boddohi S., Moore N., Johnson P.A., Kipper M.J. Polysaccharide-based polyelectrolyte complex nanoparticles from chitosan, heparin, and hyaluronan. Biomacromolecules. 2009; 10: 6: 1402-1409.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Boddohi S., Moore N., Johnson P.A., Kipper M.J. Polysaccharide-based polyelectrolyte complex nanoparticles from chitosan, heparin, and hyaluronan. Biomacromolecules. 2009; 10: 6: 1402-1409.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit51"><label>51</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Mi F.-L., Tan Y.-C., Liang H.-C. et. al. In vitro evaluation of a chitosan membrane cross-linked with genipin. J. Biomater. Sci., Polym. Ed. 2001; 12: 8: 835-850.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Mi F.-L., Tan Y.-C., Liang H.-C. et. al. In vitro evaluation of a chitosan membrane cross-linked with genipin. J. Biomater. Sci., Polym. Ed. 2001; 12: 8: 835-850.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit52"><label>52</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Shi J., Liu X., Shang Y., Cao S. Biomineralized polysaccharide alginate membrane for multi-responsive controlled drug delivery. J. Membrane Sci. 2010; 352: 1: 262-270.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Shi J., Liu X., Shang Y., Cao S. Biomineralized polysaccharide alginate membrane for multi-responsive controlled drug delivery. J. Membrane Sci. 2010; 352: 1: 262-270.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit53"><label>53</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Chen T.W., Chang S.J., Niu G.C.-C., Hsu Y.T., Kuo S.M. Alginate?coated chitosan membrane for guided tissue regeneration. J. Appl. Polym. Sci. 2006; 102: 5: 4528-4534.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Chen T.W., Chang S.J., Niu G.C.-C., Hsu Y.T., Kuo S.M. Alginate?coated chitosan membrane for guided tissue regeneration. J. Appl. Polym. Sci. 2006; 102: 5: 4528-4534.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit54"><label>54</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">George M., Abraham T.E. Polyionic hydrocolloids for the intestinal delivery of protein drugs: alginate and chitosan - a review. J. Controlled Release. 2006; 114: 1: 1-14.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">George M., Abraham T.E. Polyionic hydrocolloids for the intestinal delivery of protein drugs: alginate and chitosan - a review. J. Controlled Release. 2006; 114: 1: 1-14.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit55"><label>55</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Luo Y., Wang Q. Recent development of chitosan-based polyelectrolyte complexes with natural polysaccharides for drug delivery. Int. J. Biol. Macromol. 2014; 64: 353-367.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Luo Y., Wang Q. Recent development of chitosan-based polyelectrolyte complexes with natural polysaccharides for drug delivery. Int. J. Biol. Macromol. 2014; 64: 353-367.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit56"><label>56</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Gong R., Li C., Zhu S. et. al. A novel pH-sensitive hydrogel based on dual crosslinked alginate/N-a-glutaric acid chitosan for oral delivery of protein. Carbohydr. Polym. 2011; 85: 4: 869-874.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Gong R., Li C., Zhu S. et. al. A novel pH-sensitive hydrogel based on dual crosslinked alginate/N-a-glutaric acid chitosan for oral delivery of protein. Carbohydr. Polym. 2011; 85: 4: 869-874.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit57"><label>57</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Joshi A., Solanki S., Chaudhari R. et. al. Multifunctional alginate microspheres for biosensing, drug delivery and magnetic resonance imaging. Acta Biomaterialia. 2011; 7: 11: 3955-3963.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Joshi A., Solanki S., Chaudhari R. et. al. Multifunctional alginate microspheres for biosensing, drug delivery and magnetic resonance imaging. Acta Biomaterialia. 2011; 7: 11: 3955-3963.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit58"><label>58</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ribeiro A. J., Silva C., Ferreira D., Veiga F. Chitosan-reinforced alginate microspheres obtained through the emulsification/internal gelation technique. Eur. J. Pharm. Sci. 2005; 25: 1: 31-40.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ribeiro A. J., Silva C., Ferreira D., Veiga F. Chitosan-reinforced alginate microspheres obtained through the emulsification/internal gelation technique. Eur. J. Pharm. Sci. 2005; 25: 1: 31-40.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit59"><label>59</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Vandenberg G. W., Drolet C., Scott S.L., de la No?e J. Factors affecting protein release from alginate-chitosan coacervate microcapsules during production and gastric/intestinal simulation. J. Controlled Release. 2001; 77: 3: 297-307.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Vandenberg G. W., Drolet C., Scott S.L., de la No?e J. Factors affecting protein release from alginate-chitosan coacervate microcapsules during production and gastric/intestinal simulation. J. Controlled Release. 2001; 77: 3: 297-307.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit60"><label>60</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Yang L., Liu H. Stimuli-responsive magnetic particles and their applications in biomedical field. Powder Technol. 2013; 240: 54-65.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Yang L., Liu H. Stimuli-responsive magnetic particles and their applications in biomedical field. Powder Technol. 2013; 240: 54-65.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit61"><label>61</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Sæther H.V., Holme H.K., Maurstad G. et. al. Polyelectrolyte complex formation using alginate and chitosan. Carbohydr. Polym. 2008; 74: 4: 813-821.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sæther H.V., Holme H.K., Maurstad G. et. al. Polyelectrolyte complex formation using alginate and chitosan. Carbohydr. Polym. 2008; 74: 4: 813-821.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit62"><label>62</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Liu H.-J., Li P., Wei Q. Magnetic N-succinyl chitosan/alginate beads for carbamazepine delivery. Drug Dev. Ind. Pharm. 2010; 36: 11: 1286-1294.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Liu H.-J., Li P., Wei Q. Magnetic N-succinyl chitosan/alginate beads for carbamazepine delivery. Drug Dev. Ind. Pharm. 2010; 36: 11: 1286-1294.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit63"><label>63</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Zhang Y., Wei W., Lv P. et. al. Preparation and evaluation of alginate-chitosan microspheres for oral delivery of insulin. Eur. J. Pharm. Biopharm. 2011; 77: 1: 11-19.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zhang Y., Wei W., Lv P. et. al. Preparation and evaluation of alginate-chitosan microspheres for oral delivery of insulin. Eur. J. Pharm. Biopharm. 2011; 77: 1: 11-19.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit64"><label>64</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Tavakol M., Vasheghani-Farahani E., Dolatabadi-Farahani T., Hashemi-Najafabadi S. Sulfasalazine release from alginate-N, O-carboxymethyl chitosan gel beads coated by chitosan. Carbohydr. Polym. 2009; 77: 2: 326-330.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Tavakol M., Vasheghani-Farahani E., Dolatabadi-Farahani T., Hashemi-Najafabadi S. Sulfasalazine release from alginate-N, O-carboxymethyl chitosan gel beads coated by chitosan. Carbohydr. Polym. 2009; 77: 2: 326-330.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit65"><label>65</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Motwani S.K., Chopra S., Talegaonkar S. et. al. Chitosan-sodium alginate nanoparticles as submicroscopic reservoirs for ocular delivery: Formulation, optimisation and in vitro characterization. Eur. J. Pharm. Biopharm. 2008; 68: 3: 513-525.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Motwani S.K., Chopra S., Talegaonkar S. et. al. Chitosan-sodium alginate nanoparticles as submicroscopic reservoirs for ocular delivery: Formulation, optimisation and in vitro characterization. Eur. J. Pharm. Biopharm. 2008; 68: 3: 513-525.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit66"><label>66</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Wong T.W., Chan L.W., Kho S.B., Sia Heng P.W. Design of controlled-release solid dosage forms of alginate and chitosan using microwave. J. Controlled Release. 2002; 84: 3: 99-114.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Wong T.W., Chan L.W., Kho S.B., Sia Heng P.W. Design of controlled-release solid dosage forms of alginate and chitosan using microwave. J. Controlled Release. 2002; 84: 3: 99-114.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit67"><label>67</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Zhao Q. S., Ji Q. X., ChengX. J. et. al. Preparation of alginate coated chitosan hydrogel beads by thermosensitive internal gelation technique. J. Sol-Gel Sci. Technol. 2010; 54: 2: 232-237.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zhao Q. S., Ji Q. X., ChengX. J. et. al. Preparation of alginate coated chitosan hydrogel beads by thermosensitive internal gelation technique. J. Sol-Gel Sci. Technol. 2010; 54: 2: 232-237.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit68"><label>68</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Das R.K., Kasoju N., Bora U. Encapsulation of curcumin in alginate-chitosan-pluronic composite nanoparticles for delivery to cancer cells. Nanomedicine: Nanotechnology, Biology and Medicine. 2010; 6: 1: 153-160.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Das R.K., Kasoju N., Bora U. Encapsulation of curcumin in alginate-chitosan-pluronic composite nanoparticles for delivery to cancer cells. Nanomedicine: Nanotechnology, Biology and Medicine. 2010; 6: 1: 153-160.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit69"><label>69</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">El-Sherbiny I.M. Enhanced pH-responsive carrier system based on alginate and chemically modified carboxymethyl chitosan for oral delivery of protein drugs: preparation and in-vitro assessment. Carbohydr. Polym. 2010; 80: 4: 1125-1136.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">El-Sherbiny I.M. Enhanced pH-responsive carrier system based on alginate and chemically modified carboxymethyl chitosan for oral delivery of protein drugs: preparation and in-vitro assessment. Carbohydr. Polym. 2010; 80: 4: 1125-1136.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit70"><label>70</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ridley B.L., O’Neill M.A., Mohnen D. Pectins: structure, biosynthesis, and oligogalacturonide-related signaling. Phytochem. 2001; 57: 6: 929-967.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ridley B.L., O’Neill M.A., Mohnen D. Pectins: structure, biosynthesis, and oligogalacturonide-related signaling. Phytochem. 2001; 57: 6: 929-967.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit71"><label>71</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Sinha R., Kumria R. Polysaccharides in colon-specific drug delivery. Int. J. Pharm. 2001; 224: 1: 19-38.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sinha R., Kumria R. Polysaccharides in colon-specific drug delivery. Int. J. Pharm. 2001; 224: 1: 19-38.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit72"><label>72</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Sriamornsak P. Application of pectin in oral drug delivery. Expert Opin. Drug Deliver. 2011; 8: 8: 1009-1023.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sriamornsak P. Application of pectin in oral drug delivery. Expert Opin. Drug Deliver. 2011; 8: 8: 1009-1023.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit73"><label>73</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Wittaya-areekul S., Kruenate J., Prahsarn C. Preparation and in vitro evaluation of mucoadhesive properties of alginate/chitosan microparticles containing prednisolone. Int. J. Pharm. 2006; 312: 1: 113-118.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Wittaya-areekul S., Kruenate J., Prahsarn C. Preparation and in vitro evaluation of mucoadhesive properties of alginate/chitosan microparticles containing prednisolone. Int. J. Pharm. 2006; 312: 1: 113-118.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit74"><label>74</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Prajapati V.D., Maheriya P.M., Jani G.K., Solanki H.K. Carrageenan: a natural seaweed polysaccharide and its applications. Carbohydr. Polym. 2014; 105: 97-112.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Prajapati V.D., Maheriya P.M., Jani G.K., Solanki H.K. Carrageenan: a natural seaweed polysaccharide and its applications. Carbohydr. Polym. 2014; 105: 97-112.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit75"><label>75</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Piyakulawat P., Praphairaksit N., Chantarasiri N., Muangsin N. Preparation and evaluation of chitosan/carrageenan beads for controlled release of sodium diclofenac. Aaps PharmSciTech. 2007; 8: 4: 120-130.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Piyakulawat P., Praphairaksit N., Chantarasiri N., Muangsin N. Preparation and evaluation of chitosan/carrageenan beads for controlled release of sodium diclofenac. Aaps PharmSciTech. 2007; 8: 4: 120-130.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit76"><label>76</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Amiji M.M. Synthesis of anionic poly (ethylene glycol) derivative for chitosan surface modification in blood-contacting applications. Carbohydr. Polym. 1997; 32: 3: 193-199.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Amiji M.M. Synthesis of anionic poly (ethylene glycol) derivative for chitosan surface modification in blood-contacting applications. Carbohydr. Polym. 1997; 32: 3: 193-199.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit77"><label>77</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ekici S., Ilgin P., Butun S., Sahiner N. Hyaluronic acid hydrogel particles with tunable charges as potential drug delivery devices. Carbohydr. Polym. 2011; 84: 4: 1306-1313.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ekici S., Ilgin P., Butun S., Sahiner N. Hyaluronic acid hydrogel particles with tunable charges as potential drug delivery devices. Carbohydr. Polym. 2011; 84: 4: 1306-1313.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit78"><label>78</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Xu X., Jha A.K., Harrington D.A. et. al. Hyaluronic acid-based hydrogels: from a natural polysaccharide to complex networks. Soft Matter. 2012; 8: 12: 3280-3294.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Xu X., Jha A.K., Harrington D.A. et. al. Hyaluronic acid-based hydrogels: from a natural polysaccharide to complex networks. Soft Matter. 2012; 8: 12: 3280-3294.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit79"><label>79</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Pérez R.A., Won J.-E., Knowles J.C., Kim H.-W. Naturally and synthetic smart composite biomaterials for tissue regeneration. Adv. Drug Deliver. Rev. 2013; 65: 4: 471-496.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Pérez R.A., Won J.-E., Knowles J.C., Kim H.-W. Naturally and synthetic smart composite biomaterials for tissue regeneration. Adv. Drug Deliver. Rev. 2013; 65: 4: 471-496.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit80"><label>80</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Contreras-Ruiz L., de la Fuente M., García- Vázquez C. et. al. Ocular tolerance to a topical formulation of hyaluronic acid and chitosan-based nanoparticles. Cornea. 2010; 29: 5: 550-558.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Contreras-Ruiz L., de la Fuente M., García- Vázquez C. et. al. Ocular tolerance to a topical formulation of hyaluronic acid and chitosan-based nanoparticles. Cornea. 2010; 29: 5: 550-558.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit81"><label>81</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Manna U., Bharani S., Patil S. Layer-by-layer self-assembly of modified hyaluronic acid/chitosan based on hydrogen bonding. Biomacromol. 2009; 10: 9: 2632-2639.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Manna U., Bharani S., Patil S. Layer-by-layer self-assembly of modified hyaluronic acid/chitosan based on hydrogen bonding. Biomacromol. 2009; 10: 9: 2632-2639.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit82"><label>82</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Tan R., She Z., Wang M. et. al. Thermo-sensitive alginate-based injectable hydrogel for tissue engineering. Carbohydr. Polym. 2012; 87: 2: 1515-1521.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Tan R., She Z., Wang M. et. al. Thermo-sensitive alginate-based injectable hydrogel for tissue engineering. Carbohydr. Polym. 2012; 87: 2: 1515-1521.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit83"><label>83</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ji C., Khademhosseini A., Dehghani F. Enhancing cell penetration and proliferation in chitosan hydrogels for tissue engineering applications. Biomater. 2011; 32: 36: 9719-9729.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ji C., Khademhosseini A., Dehghani F. Enhancing cell penetration and proliferation in chitosan hydrogels for tissue engineering applications. Biomater. 2011; 32: 36: 9719-9729.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit84"><label>84</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">García-Ochoa F., Santos V.E., Casas J.A., Gómez E. Xanthan gum: production, recovery, and properties. Biotechnol. Adv. 2000; 18: 7: 549-579.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">García-Ochoa F., Santos V.E., Casas J.A., Gómez E. Xanthan gum: production, recovery, and properties. Biotechnol. Adv. 2000; 18: 7: 549-579.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit85"><label>85</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Phaechamud T., Ritthidej G.C. Sustained-release from layered matrix system comprising chitosan and xanthan gum. Drug Dev. Ind. Pharm. 2007; 33: 6: 595-605.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Phaechamud T., Ritthidej G.C. Sustained-release from layered matrix system comprising chitosan and xanthan gum. Drug Dev. Ind. Pharm. 2007; 33: 6: 595-605.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit86"><label>86</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Liu H., Nakagawa K., Kato D. et. al. Enzyme encapsulation in freeze-dried bionanocomposites prepared from chitosan and xanthan gum blend. Mater. Chem. Phys. 2011; 129: 1: 488-494.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Liu H., Nakagawa K., Kato D. et. al. Enzyme encapsulation in freeze-dried bionanocomposites prepared from chitosan and xanthan gum blend. Mater. Chem. Phys. 2011; 129: 1: 488-494.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit87"><label>87</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Giavasis I., Harvey L.M., McNeil B. Gellan gum. Crit. Rev. Biotechnol. 2000; 20: 3: 177-211.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Giavasis I., Harvey L.M., McNeil B. Gellan gum. Crit. Rev. Biotechnol. 2000; 20: 3: 177-211.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit88"><label>88</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Silva-Correia J., Oliveira J.M., Caridade S.G. et. al. Gellan gum-based hydrogels for intervertebral disc tissue?engineering applications. J. Tissue Eng. Regenerative Med. 2011; 5: 6: e97-e107.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Silva-Correia J., Oliveira J.M., Caridade S.G. et. al. Gellan gum-based hydrogels for intervertebral disc tissue?engineering applications. J. Tissue Eng. Regenerative Med. 2011; 5: 6: e97-e107.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit89"><label>89</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Prajapati V D., Jani G.K., Zala B.S., Khutliwala T.A. An insight into the emerging exopolysaccharide gellan gum as a novel polymer. Carbohydr. Polym. 2013; 93: 2: 670-678.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Prajapati V D., Jani G.K., Zala B.S., Khutliwala T.A. An insight into the emerging exopolysaccharide gellan gum as a novel polymer. Carbohydr. Polym. 2013; 93: 2: 670-678.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit90"><label>90</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ali B.H., Ziada A., Blunden G. Biological effects of gum arabic: a review of some recent research. Food Chem. Toxicol. 2009; 47: 1: 1-8.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ali B.H., Ziada A., Blunden G. Biological effects of gum arabic: a review of some recent research. Food Chem. Toxicol. 2009; 47: 1: 1-8.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit91"><label>91</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Parenteau-Bareil R., Gauvin R., Berthod F. Collagen-based biomaterials for tissue engineering applications. Mater. 2010; 3: 3: 1863-1887.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Parenteau-Bareil R., Gauvin R., Berthod F. Collagen-based biomaterials for tissue engineering applications. Mater. 2010; 3: 3: 1863-1887.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit92"><label>92</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Assaad E., Mateescu M.A. The influence of protonation ratio on properties of carboxymethyl starch excipient at various substitution degrees: Structural insights and drug release kinetics. Int. J. Pharm. 2010; 394: 1: 75-84.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Assaad E., Mateescu M.A. The influence of protonation ratio on properties of carboxymethyl starch excipient at various substitution degrees: Structural insights and drug release kinetics. Int. J. Pharm. 2010; 394: 1: 75-84.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit93"><label>93</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Friciu M.M., Canh Le T., Ispas-Szabo P., Mateescu M.A. Carboxymethyl starch and lecithin complex as matrix for targeted drug delivery: I. Monolithic Mesalamine forms for colon delivery. Eur. J. Pharm. Biopharm. 2013; 85: 3: 521-530.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Friciu M.M., Canh Le T., Ispas-Szabo P., Mateescu M.A. Carboxymethyl starch and lecithin complex as matrix for targeted drug delivery: I. Monolithic Mesalamine forms for colon delivery. Eur. J. Pharm. Biopharm. 2013; 85: 3: 521-530.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit94"><label>94</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Calinescu C., Nadeau É., Mulhbacher J., Fairbrother J.M., Mateescu M.-A. Carboxymethyl high amylose starch for F4 fimbriae gastro-resistant oral formulation. Int. J. Pharm. 2007; 343: 1: 18-25.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Calinescu C., Nadeau É., Mulhbacher J., Fairbrother J.M., Mateescu M.-A. Carboxymethyl high amylose starch for F4 fimbriae gastro-resistant oral formulation. Int. J. Pharm. 2007; 343: 1: 18-25.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit95"><label>95</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Qureshi A.I., Cohen R.D. Mesalamine delivery systems: do they really make much difference? Adv. Drug Deliver. Rev. 2005; 57: 2: 281-302.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Qureshi A.I., Cohen R.D. Mesalamine delivery systems: do they really make much difference? Adv. Drug Deliver. Rev. 2005; 57: 2: 281-302.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit96"><label>96</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Siepmann J., Peppas N.A. Modeling of drug release from delivery systems based on hydroxypropyl methylcellulose (HPMC). Adv. Drug Deliver. Rev. 2012; 64: 163-174.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Siepmann J., Peppas N.A. Modeling of drug release from delivery systems based on hydroxypropyl methylcellulose (HPMC). Adv. Drug Deliver. Rev. 2012; 64: 163-174.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit97"><label>97</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Oishi M., Hayashi H., Iijima M., Nagasaki Y. Endosomal release and intracellular delivery of anticancer drugs using pH-sensitive PEGylated nanogels. J. Mater. Chem. 2007; 17: 35: 3720-3725.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Oishi M., Hayashi H., Iijima M., Nagasaki Y. Endosomal release and intracellular delivery of anticancer drugs using pH-sensitive PEGylated nanogels. J. Mater. Chem. 2007; 17: 35: 3720-3725.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit98"><label>98</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Shim W.S., Kim J.-H., Park H. et. al. Biodegradability and biocompatibility of a pH-and thermo-sensitive hydrogel formed from a sulfonamide-modified poly (e-caprolactone-co-lactide)-poly (ethylene glycol)-poly (?-caprolactone-co-lactide) block copolymer. Biomater. 2006; 27: 30: 5178-5185.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Shim W.S., Kim J.-H., Park H. et. al. Biodegradability and biocompatibility of a pH-and thermo-sensitive hydrogel formed from a sulfonamide-modified poly (e-caprolactone-co-lactide)-poly (ethylene glycol)-poly (?-caprolactone-co-lactide) block copolymer. Biomater. 2006; 27: 30: 5178-5185.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit99"><label>99</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Du J., Tang Y., Lewis A.L., Armes S.P. pH-sensitive biocompatible block copolymer vesicles for drug delivery. J. Controlled Release. 2011; 152: e16-e17.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Du J., Tang Y., Lewis A.L., Armes S.P. pH-sensitive biocompatible block copolymer vesicles for drug delivery. J. Controlled Release. 2011; 152: e16-e17.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit100"><label>100</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ho V.H.B., Slater N.K.H., Chen R. pH-responsive endosomolytic pseudo-peptides for drug delivery to multicellular spheroids tumour models. Biomater. 2011; 32: 11: 2953-2958.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ho V.H.B., Slater N.K.H., Chen R. pH-responsive endosomolytic pseudo-peptides for drug delivery to multicellular spheroids tumour models. Biomater. 2011; 32: 11: 2953-2958.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit101"><label>101</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Yuan C.-H., Lin S.-B., Liu B. et. al. Synthesis and characterization of poly (4-acetyl acryloyl ethyl acetate-co-acrylic acid) novel temperature/ pH-sensitive hydrogels. Sens. Actuators, B: Chem. 2009; 140: 1: 155-161.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Yuan C.-H., Lin S.-B., Liu B. et. al. Synthesis and characterization of poly (4-acetyl acryloyl ethyl acetate-co-acrylic acid) novel temperature/ pH-sensitive hydrogels. Sens. Actuators, B: Chem. 2009; 140: 1: 155-161.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit102"><label>102</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Mu B., Liu P. Temperature and pH dual responsive crosslinked polymeric nanocapsules via surface-initiated atom transfer radical polymerization. React. Funct. Polym. 2012; 72: 12: 983-989.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Mu B., Liu P. Temperature and pH dual responsive crosslinked polymeric nanocapsules via surface-initiated atom transfer radical polymerization. React. Funct. Polym. 2012; 72: 12: 983-989.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit103"><label>103</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Garbern J.C., Minami E., Stayton P.S., Murry C.E. Delivery of basic fibroblast growth factor with a pH-responsive, injectable hydrogel to improve angiogenesis in infarcted myocardium. Biomater. 2011; 32: 9: 2407-2416.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Garbern J.C., Minami E., Stayton P.S., Murry C.E. Delivery of basic fibroblast growth factor with a pH-responsive, injectable hydrogel to improve angiogenesis in infarcted myocardium. Biomater. 2011; 32: 9: 2407-2416.</mixed-citation></citation-alternatives></ref></ref-list><fn-group><fn fn-type="conflict"><p>The authors declare that there are no conflicts of interest present.</p></fn></fn-group></back></article>
